Barbara Doli ska, Dominika Wo niak, Florian Ryszka Bia ka tka jaja
Transkrypt
Barbara Doli ska, Dominika Wo niak, Florian Ryszka Bia ka tka jaja
&ARM0RZEGL.AUK COPYRIGHT'RUPADR!2+WIECIÊSKIEGO)33. "IAKAÌTKAJAJAKURZEGOWAuCIWOuCIIZASTOSOWANIE "ARBARA$OLIÊSKA$OMINIKA7OxNIAK&LORIAN2YSZKA &ARMACEUTYCZNY:AKAD.AUKOWO0RODUKCYJNY`"IOCHEFAn3OSNOWIEC !PTEKA`n$BROWA'ÌRNICZA Streszczenie Opisano właściwości i możliwości zastosowania w medycynie i farmacji białek żółtka jaja kurzego: foswityny i liwetyny. Dzięki unikalnym właściwościom foswityny może ona znaleźć zastosowanie jako emulgator, substancja przeciwdrobnoustrojowa, a produkty jej hydrolizy jako nośniki wapnia w leczeniu osteoporozy. Również jej właściwości antyoksydacyjne stwarzają perspektywy jej zastosowania. Frakcja γ liwetyny (Ig Y) wyodrębniona z żółtka jaja kurzego może zostać wykorzystana w terapii wielu schorzeń oraz w immunochromatografii do izolacji substancji bioaktywnych. Abstract The properties of hen’s egg yolk proteins: phosvitin and livetin have been described in context of their applications in human medicine and pharmaceutical industry. Owing to the unique properties of phosvitin, this protein can be used as emulsifier and antimicrobial substance. The products of its hydrolysis can be used as carriers of calcium in the treatment of osteoporosis. Its antioxidant properties show that they can as well be used for pharmaceutical applications. Key words: egg yolk, proteins, properties, use Słowa kluczowe: żółtko jaja, białka, właściwości, zastosowanie ' Ö Jajo kurze jest bardzo cennym źródłem pełnowartościowego białka, składników odżywczych i mineralnych łącznie z pierwiastkami śladowymi [1,2]. Najważniejszą częścią jaja jest żółtko, które stanowi ~ 30% jego masy. Skład chemiczny żółtka zestawiono w tabeli I [2]. Żółtko w 50% swej masy składa się z wody i z 50% suchej substancji. Do substancji białkowych żółtka należy: foswityna (fosfowityna), liwetyna i lipoproteidy [1,2]. Frakcjonując żółtka jaj kurzych zmodyfikowaną metodą Lasso i Nakai można otrzymać w sposób prosty, z dużą wydajnością surowe frakcje tych substancji białkowych [3]. W żółtku można wyróżnić 70% α- i β-lipowitelin, które stanowią frakcję HDL o wysokiej gęstości. 12% stanowi frakcja LDL o niskiej gęstości i 16% foswityna. Lipowiteliny zawierają ~ 17-22% lipidów, a wśród nich ~ 40% triacylogliceroli i 60% fosfolipidów, głównie fosfatydylocholinę (lecytynę) i fosfatydyloetanoloaminę (kefalinę) oraz sfingomelinę i lysylofosfolipidy [2,4,5]. Foswityna (fosfowityna) jest główną fosfoglikoproteiną, która stanowi 7% suchej masy żółtka. Powstaje z dużej cząsteczki prekursorowej – witellogeniny [6,7]. Występuje ona w naturalnym kompleksie z innym białkiem zwanym Składnik Woda Substancja sucha: Białka: Żółtko 50,0 50,0 16,0 1. Liwetyna 2,5 2. Foswityna 3,5 3. Lipoproteidy 10,0 Lipidy: 32,0 1. Trójglicerydy 21,0 2. Fosfolipidy 10,0 3. Sterole Cukry 1,0 1,0 Sole mineralne 1,0 Tabela 1. Skład chemiczny żółtka [w %] lipowiteliną. Stosunek molowy foswityny do lipowiteliny wynosi 2:1, co odpowiada stosunkowi wagowemu 0,23:1. Rozdzielenie tego kompleksu następowało przy użyciu * Praca naukowa finansowana ze środków na realizację projektu rozwojowego „Chemiczna ekstrakcja frakcji proteinowofosfolipidowych żółtka jaja, ich enzymatyczna modyfikacja ukierunkowana na wykorzystanie biomedyczne oraz produkcję suplementów diety” (nr R 05 021 03) w latach: 2007-2010. &ARM0RZEGL.AUK roztworów siarczanu magnezu lub rozpuszczalników organicznych [2]. Charakterystyczną cechą tego białka jest duża zawartość seryny - 54% oraz brak metioniny, tryptofanu czy tyrozyny [2,8]. Jest kwaśnym białkiem bogatym w fosfor [2]. Fosfor w foswitynie związany jest głównie przez serynę. Dwie foswityny zawierają 3% α- i 10% β-fosforu, który stanowi około 80% całego fosforu żółtka [12]. Fosfor jest obecny jako kwas fosforowy powiązany z resztami serylowymi, około 96% reszt serylowych jest ufosforylowanych [13]. Wysoka zawartość fosforu w foswitynie decyduje o dużym powinowactwie do jonów metali, szczególnie żelaza. 95% żelaza z żółtka jest związane przez foswitynę. W roztworach o małej sile jonowej i niskim pH tworzy kompleksy z jonami metali: Ca2+, Mg2+, Mn2+, Co2+, Fe2+, Fe3+. Z tego też powodu foswitynę uważa się za nośnik Ca2+ i Fe2+. Wiąże prawie całe żelazo zawarte w żółtku, nawet po jego ogrzewaniu. Kompleksy żelazowe są silne i stabilne, a żelazawe są słabe i z łatwością dysocjują [9]. Foswityna to mieszanka dwóch złożonych polipeptydów: α-foswityny o masie cząsteczkowej 160 kDa i β-foswityny o masie 190 kDa [10]. α-foswityna zawiera trzy lub cztery podjednostki o masie cząsteczkowej od 35 do 40 kDa, a β-foswityna - cztery lub pięć podjednostek o masie cząsteczkowej 45 kDa. W α-foswitynie jest około 6% węglowodanów, w tym: 2,5% heksozy, 1% heksozaminy i 2% kwasu sialowego. W β-foswitynie jest tylko 2% węglowodanów, głównie heksoza [11]. W neutralnym pH foswityna istnieje w przypadkowej, spiralnej konformacji. β-konformacja przeważa w środowisku kwaśnym [14]. Zawarta w granulach żółtka foswityna to białko o właściwościach antyoksydacyjnych. Właściwości te są bardzo pożądane gdyż, procesy oksydacyjne w produktach spożywczych wykazują negatywne skutki zdrowotne prowadzące nawet do chorób nowotworowych. Foswityna nie wychwytuje wolnych rodników, tylko wiąże metale: żelazo, miedź, które z kolei katalizują procesy oksydacyjne. Jest białkiem stosunkowo mało znanym, ale interesującym gdyż, rozpuszcza się zarówno w wodzie, jak i w tłuszczu. Ze względu na właściwości antyoksydacyjne foswityny zastosowano ją jako naturalny antyutleniacz do hamowania procesów oksydacji w margarynach. Jest alternatywą dla antyoksykantów chemicznych, które mogą wykazywać właściwości toksyczne [15,16]. Wykazano także, że foswityna skutecznie hamuje utlenianie fosfolipidów katalizowane przez Fe2+ i Cu2+. Nie działa jednak jako antyoksydant w przypadku heminy. Białko to ma też wpływ na hamowanie procesu oksydacji w emulsji lipidowej z dodatkiem kationów miedzi, ale jedynie w stężeniu poniżej 5 μM Cu2+ [16,17]. Wykazano także ochronne właściwości foswityny przed światłem UV, które indukuje dodatkowo peroksydację lipidów w obecności jonów żelaza [18]. Oksydacja kwasu linolowego katalizowana przez Fe2+ jest silnie hamowana przez foswitynę. Także degradacja DNA katalizowana przez Fe2+ w obecności H2O2 jest hamowana przez foswitynę [19]. Jest skutecznym antyoksydantem w przedziale wartości pH od 5,6 do 7,8. Obniżenie wartości pH do 3,8 powoduje zmniejszenie tych właściwości foswityny. Potwierdzono także jej właściwości emulgujące i zdolności stabilizowania emulsji w stężeniu 0,5% [20,21]. Właściwości te były 2-3 krotnie wyższe niż innych białek np. albuminy wołowej, stosowanych w żywności. Stwierdzono, że N− i C−terminalne fragmenty peptydu i reszty fosforanowe są kluczowe dla jej właściwości emulgujących [1]. Badano wpływ obecności reszt fosforanowych w foswitynie na jej emulgujące właściwości. Stwierdzono, że aktywność emulgująca i stabilizująca emulsję foswityny bardzo się zmniejsza przy częściowym usunięciu fosforanu przez fosfatazę, a także przy całkowitym usunięciu fosforanu w zasadowych warunkach. Również jeśli do roztworu foswityny dodać jony wapnia, to znacznie pogarszają się jej właściwości emulgujące. Optymalne właściwości foswityny w układach dyspersyjnych są widoczne przy jej 0,5% dodatku [2,22,23]. Foswityna wykazuje właściwości emulgujące, ale ich mechanizm nie jest jasny do końca i pozostaje przedmiotem dalszych badań [2,17,24-28]. Foswityna jest stabilna podczas pasteryzacji w temp. 61oC przez 3,5 minuty, ale ulega denaturacji podczas gotowania i sterylizacji [2]. Badania nad foswityną w stężeniu 0,l mg/ml wykazały także niezwykły jej antybakteryjny efekt przeciw E. coli pod wpływem stresu termicznego w temperaturze 50oC [29]. Stwierdzono także, że foswityna wydłuża całkowity czas krzepnięcia krwi w krwi kurczaków in vitro [30]. Badania na zwierzętach wykazały, że dieta wzbogacona o foswitynę znakomicie zwiększa wbudowywanie wapnia do kości [1,31]. W plazmie znajdują się także frakcje rozpuszczalne w wodzie określane jako liwetyna Liwetyna stanowi ok. 10% całej masy żółtka [2,3]. Liwetynę rozdzielono na 3 frakcje α, β i γ. Liwetyny α i β zawierają po 14,3% azotu, a ta ostatnia zawiera też 7% glukozy. γ-liwetyna zawiera 15,6% azotu, 2,6% glukozy i 1,8% glukozaminy [2]. Wykazano, że stosunek frakcji α, β i γ wynosi odpowiednio 2:5:3. α-liwetyna – albumina jest alergenem obecnym w żółtku jaja oraz w surowicy krwi kurcząt (albumina surowicy). Została ona zidentyfikowana jako czynnik często alergizujący osoby dorosłe. Może być przyczyną występowania objawów ze strony dróg oddechowych oraz przewodu pokarmowego. Opisano przypadki astmy oskrzelowej i alergicznego zapalenia pęcherzyków płucnych u pracowników serowarni [1]. Alergen ten jest również odpowiedzialny za występowanie alergii krzyżowej związanej z uczuleniem na alergeny ptasie i jaja (ang. bird-egg syndrom) [32]. Z tego też względu należałoby liwetynę oddzielić lub zdenaturować. α-2-glikoproteina jest głównym składnikiem β-liwetyny. Prowadzono badania nad trzema różnymi fenotypami β-liwetyny. Fenotypy te są kontrolowane przez dwa autosomalne allele w pojedynczym locus. Z frakcji liwetynowej wyodrębniono transferynę, białko o różowym zabarwieniu, które wiąże żelazo znajdowane w surowicy krwi ptaków, analogiczne do konalbuminy. Liwetyna jest białkiem bardzo złożonym i nie jest jeszcze w pełni poznana. Szczególnym zainteresowaniem przemysłu żywnościowego i farmaceutycznego cieszy się frakcja γ-liwetyny. Frakcja ta posiada aktywność immunologiczną identyczną jak immunoglobulina G (IgG). Od angielskiego określenia żółtka (yolk) nazwaną ją immunoglobuliną Y(Ig Y) [2]. Rozcieńczona plazma zawierająca frakcję liwetyn i LDL lipoprotein wykorzystywana jest do otrzymywania preparatu immunoglobuliny żółtka [1]. COPYRIGHT'RUPADR!2+WIECIÊSKIEGO)33. Podstawową rolą immunoglobulin, przetransportowanych do żółtka z surowicy krwi, jest wywołanie biernej odporności u zarodka aż do momentu, gdy sam będzie w stanie wytwarzać w pełni funkcjonalne przeciwciała. Żółtko zawiera 8–20 mg/ml immunoglobulin Y, które powstają po 5–6 dniach od pojawienia się antygenu. IgY są ewolucyjnymi prekursorami IgG i IgE swoistych dla ssaków, stąd mają podobną do nich budowę. Charakteryzują się niską masą – około 180 kDa. Zawierają dwa ciężkie łańcuchy o masie cząsteczkowej 65–70 kDa i dwa lekkie o masie - 19–21 kDa. Łańcuchy ciężkie mają jeden zmienny i cztery stałe obszary domen. Immunoglobuliny Y są stabilne w szerokim zakresie pH 4–9 i dobrze znoszą wysoką temperaturę. IgY wyodrębniona z żółtka jest stosowana jako dodatek do żywności zapobiegający biegunkom i gorączce podróżniczej wywoływanych przez rotawirusy, albo stosowanego profilaktycznie w żywności dla dzieci [1,2,33]. |J¥u|ª-ylR Szybki rozwój nauk biochemicznych doprowadził do poznania poszczególnych składników żółtka jaja kurzego. Opublikowane w ostatnich latach wyniki badań w renomowanej literaturze , w tym medycznej dowodzą możliwości wykorzystania tych składników w przemyśle farmaceutycznym. Szerokie możliwości otwierają się przed foswityną. Pełni ona funkcję emulgatora o działaniu przeciwutleniającym. Udowodniono jej właściwości emulgujące i zdolność do stabilizowania emulsji. Daje to ogromne szanse do wykorzystania foswityny jako związku umożliwiającego powstanie emulsji oraz zapewnienie jej trwałości. Foswityna może być także składnikiem liposomów a fosfopeptydy otrzymywane z foswityny mogą zwiększać przyswajalność wapnia w przewodzie pokarmowym człowieka. Stąd foswityna jako źródło fosfopeptydów może mieć zastosowanie w leczeniu osteoporozy. Być może dzięki właściwościom przeciwbakteryjnym foswityna będzie kojarzona z syntetycznymi lekami w celu zwiększenia skuteczności terapii. Frakcja γ liwetyny (Ig Y) wyodrębniona z żółtka jaja kurzego może zostać wykorzystana w terapii wielu schorzeń oraz w immunochromatografii do izolacji substancji bioaktywnych. Piśmiennictwo 1. Gołąb K, Warwas M. Białka jaja kurzego– właściwości biochemiczne i zastosowania. Adv Clin Exp Med 2005; 5: 1001–1010. 2. Trziszka T. Jajczarstwo. Wydawnictwo Akademii Rolniczej we Wrocławiu. Wrocław 2000. 3. Ryszka F, Dolińska B, Leszczyńska L, Trziszka T. Rozdział białek żółtka jaja kurzego. Farm. Przegląd Naukowy 2009 (przyjęte do druku). 4. Ipatova O M, Prozorovskaia N N, Torkhovskaia T I, Baranova VS. Biological effects of the soybean phospholipids. Biomed Khim 2004; 50: 436-50. 5. Kawaguchi E, Shimokawa K, Ishii F. Physicochemical properties of structured phosphatidylcholine in drug carrier lipid emulsions for drug delivery systems. Colloids Surf B Biointerfaces 2008; 62: 130-5. 6. Finn R N. Vertebrate yolk complexes and the functional implications of phosvitins and other subdomains in vitellogenins. Biol Reprod 2007; 76: 926-35. 7. Goulas A, Triplett E L, Taborsky G. Oligophosphopeptides of varied structural complexity derived from the egg phosphoprotein, phosvitin. J Protein Chem 1996; 15: 1-9. 8. Renugopalakrishnan V, Horowitz P M, Glimcher M J. Structural studies of phosvitin in solution and in the solid state. J Biol Chem 1985; 260: 11406-13. 9. Taborsky G. Iron binding by phosvitin and its conformational consequences. J Biol Chem 1980; 255: 2976-84. 10. Ito Y, Fujii T. Chemical composition of the egg-yolk lipoproteins. J Biochem 1962; 52: 221-2. 11. Itoh T, Abe Y, Adachi S. Comparative studies on the α and β-phosvitin from hen‘s egg yolk. J Food Sci 1983; 48: 1755-1757. 12. Joubert F J, Cook W H Preparation and characterization of phosvitin from hen egg yolk. Can J Biochem Physiol 1958; 36: 399-408. 13. Byrne B M, van het Schip A D, van de Klundert J A. Amino acid sequence of phosvitin derived from the nucleotide sequence of part of the chicken vitellogenin gene. Biochemistry 1984; 23: 4275-9. 14. Damodaran S, Xu S. The role of electrostatic forces in anomalous adsorption behavior of phosvitin at the air/water interface. J Colloid Interface Sci 1996; 178: 426-435. 15. Ishikawa S, Yano Y, Arihara K, Itoh M. Egg yolk phosvitin inhibits hydroxyl radical formation from the fenton reaction. Biosci Biotechnol Biochem 2004; 68: 1324-31. 16. Lu C L, Baker R C. Characteristics of egg yolk phosvitin as an antioxidant for inhibiting metal- catalyzed phospholipid oxidations. Poult Sci 1986; 65: 2065-70. 17. Lu C L, Baker R C. Effect of pH and food ingredients on the stability of egg yolk phospholipids and the metal-chelator antioxidant activity of phosvitin. J Food Sci 1987; 52: 613-616. 18. Ishikawa S, Ohtsuki S, Tomita K. Protective effect of egg yolk phosvitin against ultraviolet- light-induced lipid peroxidation in the presence of iron ions. Biol Trace Elem Res 2005; 105: 249-56. 19. Maheswari S U, Ramadoss C S, Krishnaswamy P R. Inhibition of Fe(II) catalyzed linoleic acid oxidation and DNA damage by phosvitin. Mol Cell Biochem 1997; 177: 47-51. 20. Nakamura S, Ogawa M, Nakai S. Antioxidant Activity of a Maillard-Type Phosvitin−Galactomannan Conjugate with Emulsifying Properties and Heat Stability. J Agric Food Chem 1998; 46: 3958–3963. 21. Kahn M A, Babiker E E, Azakami H. Molecular mechanism of the excellent emulsifying properties of phosvitin-galactomannan conjugate. J Agric Food Chem 1999; 47: 2262-6. 22. Kato A, Miyazaki S, Kawamoto A. Effects of Phosphate Residues on the Excellent Emulsifying Properties of Phosphoglycoprotein Phosvitin. Agricultural and Biological Chemistry 1987; 51: 2989-2994. &ARM0RZEGL.AUK 23. Chung S L, Ferrier L K. Conditions affecting emulsifying properties of egg yolk phosvitin. J Food Sci 1991; 56: 1259-1262. 24. Anton M, Le Denmat M, Gandemer G. Thermostability of Hen Egg Yolk Granules: Contribution of Native Structure of Granules. Journal of Food Sci 2000; 65: 581-584. 25. Belhomme C, David-Briand E, Guérin-Dubiard C. Phosvitin-calcium aggregation and organization at the air-water interface. Colloids Surf B Biointerfaces 2008; 63: 12-20. 26. Rotimi E, Aluko E, Yoshinori M. Competitive Adsorption of Hen‘s Egg Yolk Granule Lipoproteins and Phosvitin in Oil-in-Water Emulsions J Agric Food Chem 1997; 45: 4564–4570. 27. Nilsson L, Osmark P, Fernandez C. Competitive Adsorption of Proteins from Total Hen Egg Yolk during Emulsification. J Agric Food Chem 2007; 55: 6746–6753. 28. Castellani O, Belhomme C, David-Briand E. The role of metal ions in emulsion characteristics and flocculation behaviour of phosvitin-stabilised emulsions. Food Hydrocolloids 2008; 22: 1243-1253. 29. Sattar Khan M A, Nakamura S, Ogawa M. Bactericidal action of egg yolk phosvitin against Escherichia coliunder thermal stress. J Agric Food Chem 2000; 48: 1503-6. 30. Sato K, Homma K, Gotoh J. Anticlotting activity of phosvitin on chicken blood in vitro. Am J Physiol 1962; 203: 1170-1172. 31. Choi I, Jung Ch, Choi H. Effectiveness of phosvitin peptides on enhancing bioavailability of calcium and its accumulation in bones. Food Chemistry 2005; 93: 577-583. 32. Quirce S, Maranon F, Umpierrez A. Chicken serum albumin (Gal d5) is a partially heat-labile inhalant and food allergen implicated in the bird-egg syndrome. Allergy 2001; 56: 754-762. 33. Tini M, Jewell U R, Camenisch G. Generation and application of chicken egg−yolk antibodies. Comp Bioch Phys Part A 2001; 131: 569–574. Adres do korespondencji: Dr hab. n. farm. Barbara Dolińska Farmaceutyczny Zakład Naukowo-Produkcyjny „Biochefa”, 41-205 Sosnowiec, Kasztanowa 3 Tel.: 0-32/ 291-69-68 e-mail: [email protected]