instrukcja klient 25.10.2010

WSSE WROCŁAW INSTRUKCJA OGÓLNA IM-01/PM-09 POBIERANIE I TRANSPORT MATERIAŁU DO BADAŃ
MIKROBIOLOGICZNYCH Nr wydania 05
Data wydania 25.10.2010
1. CEL I PRZEDMIOT INSTRUKCJI:
Celem i przedmiotem instrukcji jest prawidłowe pobieranie i transport materiału biologicznego
do
badań
bakteriologicznych,
mykologicznych,
serologicznych,
wirusologicznych,
parazytologicznych oraz do badań wykonywanych przez Pracownię Badań Czystościowych i
Szkodliwych Czynników Biologicznych.
2. ZAKRES STOSOWANIA:
Zleceniodawcy, pacjenci, osoby pobierające i transportujące materiał biologiczny (próbki) do
Oddziału Mikrobiologii.
3. ODPOWIEDZIALNOŚĆ:
Zleceniodawcy, pacjenci, osoby pobierające i transportujące ponoszą pełną odpowiedzialność za
wszystkie etapy pobrania i transportu próbek, do momentu dostarczenia do Oddziału
Mikrobiologii.
4. TERMINY I DEFINICJE:
4.1. WYMAZÓWKA- mały wacik na giętkim pręcie.
5. TRYB POSTĘPOWANIA - zasady ogólne:
Pobieranie – (warunki szczegółowe jeśli dotyczą są podane w podpunktach od 5.1. do 5.18.):
Materiał w zaleŜności od rodzaju powinien być pobrany przez osobę posiadającą uprawnienia do
pobierania materiału np. pielęgniarkę, lekarza, diagnostę laboratoryjnego lub samego pacjenta.
JeŜeli materiał pobiera pacjent (np. mocz, kał, plwocina, nasienie) powinien zapoznać się
z instrukcją prawidłowego postępowania.
JeŜeli materiał pobiera zleceniodawca badań czystościowych i szkodliwych czynników
biologicznych powinien zapoznać się z instrukcją prawidłowego postępowania.
Materiał do badań bakteriologicznych naleŜy pobierać we wczesnym okresie choroby, przed
podaniem choremu antybiotyków lub 5-7 dni po ich odstawieniu (kontrola skuteczności
antybiotykoterapii). Materiał w zaleŜności od rodzaju i kierunku badania naleŜy pobierać do
pojemnika,
przeznaczonego
do
przechowywania
i
transportu
próbek
do
badań
mikrobiologicznych np. (probówce, kałówce, pojemniku na mocz itp.).
Pojemniki do pobierania materiału do badań do celów sanitarno-epidemiologicznych pacjenci
otrzymują w Punkcie Przyjęcia Próbek lub są informowani o moŜliwości ich zakupu.
Transport - wszystkie materiały naleŜy dostarczyć do laboratorium w moŜliwie najkrótszym
czasie, niektóre, w zaleŜności od czasu transportu, naleŜy schładzać (warunki szczegółowe jeśli
dotyczą są podane w podpunktach od 5.1. do 5.18.).
Przekazanie do laboratorium. Materiał powinien być przekazywany do laboratorium
w pojemniku oznaczonym imieniem i nazwiskiem (w przypadku pacjenta) lub innym
indywidualnym oznaczeniem (np. dla szczepów przesyłanych do identyfikacji) wraz
z dokumentem przekazania próbki np. skierowaniem lekarskim, protokołem pobrania próbki,
zleceniem, umową. Dokument zlecenia powinien zawierać dane zgodne z Rozporządzeniem
Ministra Zdrowia z dnia 23 marca 2006 r. w sprawie standardów jakości dla medycznych
laboratoriów diagnostycznych i mikrobiologicznych z późn. zm.
W przypadku odstępstw od niniejszej instrukcji naleŜy uzgadniać warunki indywidualne
z Kierownikiem technicznym danego kierunku badań.
5.1. Pobranie wymazu z gardła lub jamy nosowo-gardłowej:
Pacjent powinien być na czczo, uprzednio powinien przepłukać usta przegotowaną wodą,
jałowym wacikiem pobrać materiał z migdałków, łuków podniebiennych i tylnej ściany gardła,
lub ze zmian ropnych (czopy). Nie zanieczyszczać wymazówki śliną. W przypadku pobierania
materiału z jamy nosowo-gardłowej naleŜy posługiwać się małym wacikiem na giętkim pręcie.
Wacik wprowadza się za języczkiem podniebiennym ku górze w celu wymazania tylnej ściany
gardła.
W przypadku badań epidemiologicznych w kierunku krztuśca, naleŜy stosować
wymazówki z dakronu lub alginianu wapnia, stosować podłoŜa transportowe.
Instrukcja pobrania i transportu materiału z gardła i nosa w kierunku grypy jest
dostępna na stronie Krajowego Ośrodka ds. Grypy NIZP-PZH www.pzh.gov.pl oraz na stronie
http://wssewroclaw.pis.gov.pl.
Strona 1 z 6
WSSE WROCŁAW INSTRUKCJA OGÓLNA IM-01/PM-09 POBIERANIE I TRANSPORT MATERIAŁU DO BADAŃ
MIKROBIOLOGICZNYCH Nr wydania 05
Data wydania 25.10.2010
5.2. Pobieranie wymazów z nosa
Wymaz z nosa naleŜy wykonać suchą lub zwilŜoną w jałowym roztworze NaCl wymazówką.
Przed pobraniem wymazu nie naleŜy stosować przynajmniej 1 dzień wcześniej preparatów do
nosa o działaniu przeciwbakteryjnym. Wymaz naleŜy pobrać z tylnych nozdrzy. Wymazy
z gardła i nosa pobrane za pomocą suchej wymazówki naleŜy dostarczyć do laboratorium
w czasie 3 godz. JeŜeli materiał jest pobrany na podłoŜe transportowe, to moŜna go
przechowywać w temperaturze pokojowej do 72 godz.
5.3. Pobieranie wymazów z ucha:
Skórę ucha naleŜy uprzednio oczyścić tamponem nasączonym 70% alkoholem etylowym.
Jałową wymazówką (osobno do kaŜdego ucha) nasączonym roztworem soli fizjologicznej (NaCl),
pobrać treść zmian ropnych. W przypadkach zachowanej ciągłości błony bębenkowej wymaz
z przewodu słuchowego zewnętrznego nie jest przydatny do diagnostyki mikrobiologicznej.
W przypadku pęknięcia błony bębenkowej lub tympanopunkcji naleŜy pobrać treść ropną.
Materiał naleŜy dostarczyć do laboratorium w ciągu 2 godz. od pobrania. W przypadku
dłuŜszego czasu transportu naleŜy stosować podłoŜa transportowe.
5.4. Pobieranie plwociny:
Powinna być pobrana rano, na czczo, po uprzednim umyciu zębów i przepłukaniu ust
przegotowaną wodą. Plwocinę naleŜy odksztuszać do jałowego pojemnika – nie pluć. Objętość
plwociny powinna wynosić 1-3 ml. Transport plwociny – do dwóch godzin – powinien przebiegać
w temp. pokojowej, przedłuŜenie czasu transportu wymaga schłodzenia materiału. Próbka
plwociny musi być dostarczona do badania przed upływem 24 godzin.
5.5. Pobieranie krwi na badania bakteriologiczne w kierunku Salmonella, Shigella:
Krew naleŜy pobierać na skrzep do jałowych probówek w ilości 5 ml ze świeŜego wkłucia do Ŝyły
(nie z cewników). Skórę naleŜy przed wkłuciem zdezynfekować. Przy podejrzeniu duru
brzusznego krew pobrać w 1 tygodniu choroby i dostarczyć do laboratorium w moŜliwe
najkrótszym czasie.
5.6. Krew na badania serologiczne, wirusologiczne powinna być pobrana dwukrotnie
w odstępach 2-3 tygodniowych (jeśli to zasadne). Krew naleŜy pobierać na skrzep w ilości 5 ml
lub uzyskać 2-4 ml surowicy. Krew powinna być pobrana do jałowych probówek bez
konserwantów, ewentualnie ze środkami przyspieszającymi krzepnięcie krwi. Do czasu
przekazania do laboratorium moŜna przechowywać: krew – 1 dzień w temp. lodówki, surowicę –
do 7 dni w temp. lodówki, surowicę – jeŜeli musi być przechowywana dłuŜej niŜ 1 tydzień
zamraŜać w temperaturze równej lub niŜszej niŜ -20ºC.
5.7. Pobieranie wymazu z oka:
Nie pobierać w ciągu 4 godzin po płukaniu lub podaniu środków przeciwbakteryjnych, wydzielinę
pobrać najlepiej jałową ezą i wykonać natychmiast posiew na podłoŜa bakteriologiczne.
Wyjątkowo moŜna stosować bardzo cieniutkie wymazówki (okulistyczne) i umieścić w podłoŜu
transportowym. Pobieranie wymazów grubymi wymazówkami jak do gardła i nosa powoduje
zawsze zanieczyszczenie bakteriami ze skóry i rzęs. Do laboratorium dostarczyć w czasie 2
godz., jeŜeli spodziewany czas transportu będzie dłuŜszy, to naleŜy zastosować podłoŜe
transportowe.
5.8. Pobieranie i transport moczu:
NaleŜy pobrać rano po przerwie nocnej min. 4 godzinnej, po dokładnym umyciu krocza i cewki
moczowej (nie naleŜy się wycierać). Mocz powinien pochodzić ze środkowego strumienia i być
oddany w ilości około 5 ml. bezpośrednio do jałowego pojemnika. We wszystkich przypadkach
wątpliwych wyników badań u noworodków, chorych nieprzytomnych zaleca się pobieranie
moczu przez nakłucia nadłonowe lub cewnikowanie pęcherza moczowego. Do czasu transportu
mocz przechowywać w lodówce, dostarczyć do laboratorium w czasie 2 godz. od pobrania. JeŜeli
przewidujemy dłuŜszy czas transportu to materiał naleŜy pobrać na podłoŜe transportowe.
5.9. Pobieranie i transport ropy, wymazu z rany, wymazu z napletka, nasienia:
Strona 2 z 6
WSSE WROCŁAW INSTRUKCJA OGÓLNA IM-01/PM-09 POBIERANIE I TRANSPORT MATERIAŁU DO BADAŃ
MIKROBIOLOGICZNYCH Nr wydania 05
Data wydania 25.10.2010
Materiał ropny, tkanki, płyn wysiękowy wymaz z rany, wymaz z napletka powinny być pobrane
przez pielęgniarkę lub lekarza. Przed pobraniem ropy, nasienia naleŜy odkazić skórę. Ze zmian
powierzchniowych materiał pobrać z jak najgłębszych warstw za pomocą jałowej wymazówki
zwilŜonej solą fizjologiczną. Materiał z ropni zamkniętych pobrać po nacięciu chirurgicznym
odrzucając pierwszą porcję ropy.
Materiał z ropni głębokich aspiruje się strzykawką lub pobiera się jałową wymazówką z węglem
aktywnym. Po pobraniu probówkę naleŜy dobrze zamknąć gumowym korkiem.
Przy pobieraniu wymazów wskazane jest pobranie dwóch wymazówek, jedna bez podłoŜa
transportowego do wykonania preparatu bezpośredniego. Materiał pobrany z ropni naleŜy
dostarczyć do laboratorium w czasie 2 godzin. JeŜeli czas transportu jest dłuŜszy to naleŜy
zastosować podłoŜe transportowe.
Materiał do badań w kierunku beztlenowców przechowuje się i przesyła w temperaturze
pokojowej.
5.10. Wymazy z pochwy, szyjki macicy, cewki moczowej:
Materiał powinien być pobrany przez pielęgniarkę, połoŜną lub lekarza. Materiał naleŜy pobrać
rano przed oddaniem moczu lub 3 godziny po ostatnim oddaniu moczu, przed pobraniem
wymazu nie powinno się stosować środków odkaŜających i leczniczych. W stanach zapalnych
pochwy pobiera się wydzielinę ze ścian lub tylnego sklepienia pochwy. W zapaleniach gruczołu
Bartoliniego gdy wydzielina jest obfita, pobrać do strzykawki i przenieść do jałowego pojemnika.
Transport materiału 2-3 godz., przy badaniach ukierunkowanych naleŜy stosować podłoŜa
transportowe.
5.11. Pobieranie kału na badanie bakteriologiczne:
NaleŜy pobrać grudkę kału wielkości duŜego orzecha laskowego do pojemnika, w przypadku
silnej biegunki około 3 ml kału płynnego. Materiału nie naleŜy pobierać z urządzeń
sanitarnych. Dopuszcza się równieŜ pobranie wymazu z odbytu. W celu pobrania wymazu
naleŜy wprowadzić poza zwieracz zewnętrzny jałową wymazówkę i wielokrotnie nią obracając
pobrać materiał. Czas transportu powinien być moŜliwie jak najkrótszy. JeŜeli przewiduje się
dłuŜszy czas transportu próbki naleŜy zastosować podłoŜe transportowe.
5.11.1. Badania do celów sanitarno-epidemiologicznych - kał naleŜy pobierać przez trzy kolejne
dni (dopuszcza się 1-2 dniowe odstępy pomiędzy kolejnymi próbkami) Pobraną próbkę
kaŜdorazowo naleŜy dostarczyć do laboratorium. W przypadku, gdy nie udaje się uzyskać
próbek kału do badania w kierunku Salmonella, Shigella dopuszcza się pobranie wymazu z
odbytu. Transport kału, wymazu – do dwóch godzin – moŜe przebiegać w temp. pokojowej,
przedłuŜenie czasu transportu wymaga schłodzenia materiału. Próbka kału, wymazu powinna
być dostarczona do badania przed upływem 24 godzin.
5.12. Materiał na badania parazytologiczne:
5.12.1. Kał. NaleŜy pobrać do ¾ wielkości pojemnika na kał, przy stolcach płynnych do ½
wielkości pojemnika na kał (pojemnik taki sam jak uŜywany do badań mikrobiologicznych). Kał
naleŜy pobrać z trzech róŜnych miejsc wypróŜnienia (z ropą i z krwią jeŜeli występują). Materiał
w czasie 2 godz. naleŜy dostarczyć do laboratorium. W przypadku przedłuŜonego do 24 h czasu
dostarczenia materiału do laboratorium powinien być on przechowywany w temp. 2-8 oC. Kał
od osób wracających z tropiku naleŜy dostarczyć do ½ godz. od momentu defekacji
z zachowaniem temp. około 36°C
5.12.2. Wycier okołoodbytniczy/ wymaz. Wycier/wymaz naleŜy pobrać rano przed wykonaniem
wszelkich czynności higieniczno-fiziologicznych. Suchą wymazówką bakteriologiczną naleŜy
ruchem okręŜnym wytrzeć tylko zewnętrzne fałdy odbytu.
5.12.3. Odcisk okołoodbytniczy. Odcisk naleŜy pobrać rano przed wykonaniem wszelkich
czynności higieniczno-fiziologicznych. Rozsunąć jedną ręką pośladki i przykleić taśmę stroną
klejącą na 5 sekund do fałd odbytu. Następnie taśmę odkleić i przykleić do otrzymanego
szkiełka.
5.13. Kał na badania wirusologiczne:
NaleŜy pobrać grudkę kału wielkości orzecha laskowego, w przypadku silnej biegunki około 1-3
ml kału płynnego. Materiału nie naleŜy pobierać z urządzeń sanitarnych. Kał naleŜy
pobrać trzykrotnie w odstępach 2-3 dni. Materiał naleŜy transportować w warunkach
schłodzenia, do laboratorium dostarczyć w ciągu 4 godz. JeŜeli przewiduje się transport do 24
godz. to naleŜy zamrozić w temp. równej, niŜszej -20 oC, powyŜej 24 godz. –zamrozić w -70 oC.
5.13.1.
Kał
do
badań
wirusologicznych
czynników
schorzeń
jelitowych
(np.rotawirusy) naleŜy transportować/przechowywać w warunkach schłodzenia 2-8 oC do 72
Strona 3 z 6
WSSE WROCŁAW INSTRUKCJA OGÓLNA IM-01/PM-09 POBIERANIE I TRANSPORT MATERIAŁU DO BADAŃ
MIKROBIOLOGICZNYCH Nr wydania 05
Data wydania 25.10.2010
godzin. JeŜeli przewiduje się dłuŜszy czas transportu/przechowywania to materiał naleŜy
zamrozić w temp. równej, niŜszej -20 oC.
5.14. Płyn mózgowo – rdzeniowy:
Do badań wirusologicznych, serologicznych pobierać w warunkach aseptycznych do jałowych
probówek w ilości 1-3 ml. Płyn mózgowo rdzeniowy moŜna zamraŜać w temp. równej, niŜszej 20 oC lub przesyłać w stanie schłodzenia.
5.15. śółć:
Pobiera się ją z dwunastnicy przy pomocy jałowego zgłębnika w ilości około 2-3 ml i przesyła
w jałowej szczelnie zakorkowanej i prawidłowo oznakowanej probówce, w czasie 2 godz. od
pobrania, dopuszcza się dłuŜszy czas transportu na podłoŜu transportowym.
5.16. Pobieranie materiału do badań mykologicznych:
Materiał pobrany do badania w kierunku grzybic naleŜy pobierać do jałowych pojemników oraz
zgodnie z zasadami poboru materiału z miejsc, których zakaŜenie dotyczy, np.:
• owrzodzenia grzybicze rogówki - pobrać za pomocą jałowej ezy lub wymazówki;
• plwocina - rano po wypłukaniu jamy ustnej;
• płyny ustrojowe - płyn otrzewnowy, stawowy, opłucnowy pobierane do pojemników
z niewielką ilością heparyny;
• Kał - NaleŜy pobrać grudkę kału wielkości orzecha laskowego do czystego pojemnika;
w przypadku silnej biegunki około 3 ml. kału płynnego. Materiału nie naleŜy pobierać z
urządzeń sanitarnych (przechowywać w temperaturze lodówki);
• Mocz – naleŜy pobierać i przesyłać zgodnie z punktem 5.8.
5.17. Badania wykonywane w Pracowni Badań
Czynników Biologicznych.
5.17.1. Badanie czystości mikrobiologicznej powietrza
Czystościowych
i
Szkodliwych
1. Metoda sedymentacyjna
Przed przystąpieniem do pobierania próbek naleŜy zamknąć okna i drzwi.
Próbki powietrza pobierać bezpośrednio na płytki Petriego z odpowiednim podłoŜem
przeznaczając dla kaŜdego punktu pomiarowego 3 płytki równoległe na wysokości ok. 1,3m.
Eksponować 5-60 minut lub dłuŜej w zaleŜności od przypuszczalnego stopnia zanieczyszczenia
powietrza.
Po upływie określonego czasu płytki zamknąć, opisać (data, czas i miejsce
ekspozycji) włoŜyć do tubusa zabezpieczając przed zanieczyszczeniami i uszkodzeniem.
Dostarczyć do pracowni nie później niŜ 5 godz. od pobrania próbek. Transportować w temp.
pokojowej.
2. Metoda impakcyjna
Płytki Petriego
z odpowiednimi podłoŜami umieszcza się wewnątrz komory impakcyjnej
aparatu. Pobór powietrza odbywa się z przepływem 100 l/min. Płytka Petriego umieszczona jest
na obrotowym stoliku dzięki temu mikroorganizmy występujące w powietrzu zostają
równomiernie rozsiane na powierzchni poŜywki. Po upływie czasu płytki umieścić w tubusie i
dostarczyć do pracowni wykonującej badanie nie później niŜ 5 godz. od pobrania próbek.
Transportować w temp. pokojowej.
5.17.2. Czystość mikrobiologiczna powierzchni:
5.17.2.1. Metoda kontaktowa
– ilościowa słuŜąca do kontroli powierzchni płaskich i suchych za pomocą płytek zawierających
odpowiednie podłoŜe wzrostowe z meniskiem wypukłym o powierzchni 25 cm2.
Do badań ilościowych pojedyńcza próbka składa się z podłoŜy: TSA (tryptozowosojowego) i Sabourauda. Do pobranych próbek naleŜy dołączyć kontrolę: płytkę TSA, płytkę
Sabourauda.
Sposób poboru:
• płytki osuszyć i doprowadzić do temp. otoczenia.
• zdjąć wieczko i przyłoŜyć do badanej powierzchni na 10 sek. unikając obracania płytki. MoŜna
uŜyć aplikatora o sile nacisku 500 g
• zamknąć płytkę, odwrócić wieczkiem do dołu oznakować i umieścić w opakowaniu
przeznaczonym do transportu (pojemniki Bi-Box)
Strona 4 z 6
WSSE WROCŁAW INSTRUKCJA OGÓLNA IM-01/PM-09 POBIERANIE I TRANSPORT MATERIAŁU DO BADAŃ
MIKROBIOLOGICZNYCH Nr wydania 05
Data wydania 25.10.2010
oczyścić miejsce przyłoŜenia z ewentualnych resztek podłoŜa
płytki transportować i przechowywać nie dłuŜej niŜ 24 godz. bez dostępu światła w temp. od
5°C do 15°C.
5.17.2.2. Metoda wymazów – jakościowa, słuŜąca do kontroli powierzchni za pomocą
jałowych wymazówek zanurzonych w płynie transportowym.
Sposób poboru
• wyjąć wymazówkę ze sterylnego opakowania i nawilŜyć jej koniec przez zanurzenie w
probówce zawierającej płyn transportowy. Przycisnąć koniec wymazówki do ścianki probówki dla
usunięcia nadmiaru płynu. Umieścić koniec wymazówki na powierzchni poddawanej badaniu i
przetrzeć określony obszar obracając wymazówkę w dwóch kierunkach. WłoŜyć wymazówkę do
probówki z płynem transportowym i aseptycznie złamać lub odciąć patyczek.
• wstawić do statywu zabezpieczając przed wylaniem, oznakować i dostarczyć do Pracowni CB
• transportować w pojemniku w temp. od 5°C do 15°C w czasie 4 godz. od momentu pobrania.
•
•
5.17.3. Badanie jałowości
Próbki do badań z pojemników wielokrotnego uŜytku (puszki, kontenery) naleŜy pobierać
aseptycznie do sterylnych pojemników lub torebek. Próbki materiału sterylizowanego
w rękawach i torebkach papierowo-foliowych naleŜy zabezpieczyć przed uszkodzeniem stosując
dodatkowe opakowanie. KaŜdą próbkę opisać podając datę sterylizacji, poboru oraz otwarcia
pojemnika wielokrotnego uŜytku.
5.17.4. Badanie czystości mikrobiologicznej.
Pobieranie i transport próbek oraz wielkość próbek ustalona z uwzględnieniem wymagań
zleceniodawcy.
5.17.5. Kontrola biologiczna procesu sterylizacji
• Po ekspozycji Sporal S zabezpieczony przed zanieczyszczeniem i zawilgoceniem naleŜy
dostarczyć do laboratorium w ciągu 24 godz.
• Po ekspozycji wskaźniki: atest (para wodna) i atest (tlenek etylenu) transportować
w temperaturze pokojowej do 25°C do 4 dni. Wskaźniki biologicznej skuteczności procesu sterylizacji
po ekspozycji moŜna przechowywać w chłodziarce do 7 dni w temp. 2-7˚C. Nie wolno przechowywać
w temperaturze równej, niŜszej niŜ 0°C.
• zabezpieczyć wskaźniki przed uszkodzeniami w czasie sterylizacji (umieścić w rękawie lub
torebce papierowo-foliowej)
• włoŜyć je do pakietów testowych i ułoŜyć równomiernie w komorze sterylizatora (półka górna i
dolna)
• przeprowadzić wybrany proces sterylizacji
• wyjąć wskaźniki z pakietu kontrolnego i opisać (data sterylizacji oraz rozmieszczenie)
• zabezpieczyć przed uszkodzeniem i zanieczyszczeniem
5.17.6. Kontrola skuteczności dezynfekcji komorowej
Kontrolę przeprowadza pracownik Nadzoru Epidemiologicznego za pomocą testów „A” i „S”. Po
ekspozycji testów i zabezpieczeniu przed zanieczyszczeniem i zawilgoceniem próbki naleŜy
dostarczyć wraz z protokołem z kontroli do pracowni w czasie 24 godz. Transportować w temp.
pokojowej tj. do 25 °C lub w temperaturze od 2°C do 8°C.
5.18. Dostarczanie szczepów bakteryjnych w celu identyfikacji bądź potwierdzenia
identyfikacji.
Wyizolowane szczepy bakteryjne naleŜy przesłać na skosach agarowych zabezpieczonych przed
wyschnięciem i zanieczyszczeniem oraz oznaczone np. imieniem nazwiskiem pacjenta, kodem
próbki, z której zostały wyhodowane. Transport i przekazanie próbki ze szczepem do Oddziału
Mikrobiologii powinien być zgodny z punktem 5- zasadami ogólnymi. Szczepy naleŜy przesyłać
przesyłką priorytetową odpowiednio oznaczoną (materiał zakaźny) lub dostarczać osobiście.
5.19. CZAS OCZEKIWANIA NA WYNIKI BADAŃ:
A. Badania bakteriologiczne
Od 2 do 5 dni w zaleŜności od rodzaju i ilości izolowanych bakterii. Tylko badania
bakteriologiczne moczu, w przypadku wyniku ujemnego, moŜna odebrać po 24 godzinach.
Strona 5 z 6
WSSE WROCŁAW INSTRUKCJA OGÓLNA IM-01/PM-09 POBIERANIE I TRANSPORT MATERIAŁU DO BADAŃ
MIKROBIOLOGICZNYCH Nr wydania 05
Data wydania 25.10.2010
Pracownia Schorzeń Jelitowych zastrzega sobie moŜliwość przedłuŜenia do 2 tygodni czasu
oczekiwania na pełny wynik w przypadku typowania serologicznego.
B. Badania serologiczne
Od 2 dni do 2 tygodni w zaleŜności od ilości zlecanych badań przez naszych zleceniodawców.
KaŜdorazowo w punkcie przyjęcia próbek naleŜy zapytać kiedy moŜna odebrać wyniki badań.
C. Badania parazytologiczne kału
Od 2 do 5 dni wynik badania koproskopowego (np. kału). W przypadku badań
immunoenzymatycznych (np. lambliozy), w zaleŜności od ilości zlecanych badań przez naszych
zleceniodawców do 1 tygodnia.
D. Badanie mykologiczne
Do 10 dni w zaleŜności od czasu izolacji grzybów.
E. Badania Pracowni Badań Czystościowych i Szkodliwych Czynników Biologicznych.
Od 3 do 16 dni w zaleŜności od rodzaju badania
6. Dokumenty związane.
Brak
7. Wykaz załączników
Brak
Strona 6 z 6